Реакция на манту прививка: Проба Манту

Туберкулин (внутрикожное введение) Побочные эффекты

Побочные эффекты

Информация о лекарствах предоставлена: IBM Micromedex

Наряду с необходимыми эффектами лекарство может вызывать некоторые нежелательные эффекты. Хотя не все из этих побочных эффектов могут возникнуть, в случае их возникновения может потребоваться медицинская помощь.

Немедленно обратитесь к врачу или медсестре, если возникают какие-либо из следующих побочных эффектов:

Заболеваемость неизвестна

1. Кровотечение в месте инъекции (возникает в течение 3 дней после кожной пробы).
2. образование волдырей, корок или струпьев в месте инъекции
3. кашель
4. глубокий темно-фиолетовый синяк в месте инъекции (появляется в течение 3 дней после кожной пробы)
5. затрудненное или затрудненное дыхание
6. головокружение
7. обморок
8. быстрое сердцебиение
9. жар
10. твердая шишка в месте укола
11. крапивница
12. зуд, боль, покраснение или отек в месте инъекции
13. большие, похожие на улей опухоли на лице, веках, губах, языке, горле, руках, ногах, ступнях или половых органах
14. шумное дыхание
15. отечность или отек век или вокруг глаз, лица, губ или языка
16. шрам на месте укола
17. необычная усталость или слабость

Могут возникнуть некоторые побочные эффекты, которые обычно не требуют медицинской помощи.Эти побочные эффекты могут исчезнуть во время лечения, когда ваше тело приспособится к лекарству. Кроме того, ваш лечащий врач может рассказать вам о способах предотвращения или уменьшения некоторых из этих побочных эффектов. Проконсультируйтесь со своим лечащим врачом, если какие-либо из следующих побочных эффектов сохраняются или вызывают беспокойство, или если у вас есть какие-либо вопросы о них:

Заболеваемость неизвестна

1. Боль, дискомфорт или зуд в месте инъекции
2. покраснение или сыпь в месте инъекции (появляются в течение 12 часов после кожной пробы)

У некоторых пациентов могут возникать и другие побочные эффекты, не указанные в списке.Если вы заметили какие-либо другие эффекты, проконсультируйтесь с врачом.

Обратитесь к врачу за медицинской консультацией о побочных эффектах. Вы можете сообщить о побочных эффектах в FDA по телефону 1-800-FDA-1088.

Последнее обновление частей этого документа: 1 февраля 2021 г.

Авторские права © IBM Watson Health, 2021 г. Все права защищены. Информация предназначена только для использования Конечным пользователем и не может быть продана, распространена или иным образом использована в коммерческих целях.

.

Туберкулиновая кожная проба в связи с иммунологическими реакциями in vitro у медицинских работников, вакцинированных БЦЖ

Реферат

Цель заключалась в изучении туберкулиновой кожной пробы в связи с иммунологическими реакциями in vitro у медицинских работников, вакцинированных бациллой Кальметта-Герена (БЦЖ).

Настоящее исследование было проведено в Швеции, стране с низкой заболеваемостью туберкулезом, высокой эффективностью вакцинации БЦЖ и высокой конверсией туберкулина.Медицинские работники, вакцинированные БЦЖ (n = 381), прошли кожный туберкулиновый тест. Из них 11 субъектов с отрицательными туберкулиновыми реакциями (<6 мм) были сопоставлены по возрасту и полу с 11 пациентами с сильными положительными реакциями (≥15 мм). Трансформацию лимфоцитов и продукцию интерферона-гамма (IFN-γ) анализировали после стимуляции in vitro мононуклеарных клеток периферической крови очищенным туберкулиновым производным белка, убитыми нагреванием туберкулезными палочками и фильтратом культуры из туберкулезных микобактерий.

В туберкулин-положительной группе реакция трансформации лимфоцитов была в 2–3 раза больше, а продукция IFN-γ — в 7–10 раз больше, чем в туберкулин-отрицательной группе (p <0,001).

Настоящие результаты предполагают, что положительный туберкулиновый кожный тест у субъектов, вакцинированных бациллой Кальметта-Герена, указывает на более сильный иммунный ответ защитного Т-хелпера 1-типа, чем отрицательный тест. В аналогичных условиях исследование поддерживает традиционную практику рассмотрения туберкулиновой кожной пробы у субъектов, вакцинированных бациллой Кальметта-Герена, как индикатора защитного иммунного ответа против туберкулеза.

Это исследование получило щедрую финансовую поддержку от Фонда Оскара и Ханны Бьёркбом и Шведского фонда сердца и легких.

Новаторская работа в Скандинавии показала, что медицинские работники с положительной туберкулиновой кожной пробой были более устойчивы к туберкулезу (ТБ), чем те, кто дал отрицательный результат 1, 2. Другие исследования показали, что медицинские работники с положительной туберкулиновой пробой после бациллы Кальметта-Герена (BCG ) вакцинация была более устойчивой к туберкулезу, чем те, у кого кожная проба оставалась отрицательной 3, 4.

Впоследствии положительный туберкулиновый кожный тест использовался для определения защиты от ТБ в странах с программами вакцинации БЦЖ 5–7. Однако эта гиперчувствительность замедленного типа не идентична защитному иммунному ответу против ТБ 8, и ее значение как индикатора защитного иммунного ответа является спорным 9–12.

В этом контексте привлекательным методом оценки туберкулиновой кожной пробы является использование суррогатных маркеров защитного иммунитета.Интерферон-гамма (IFN-γ) является ключевым цитокином для активации макрофагов и усиленного внутриклеточного уничтожения патогенов. Некоторые находки указывают на центральную роль ответа IFN-γ, происходящего из клеток Т-хелперов 1 (Th2), в защите человека от ТБ 13-17. Следовательно, количество продукции IFN-γ после стимуляции лимфоцитов микобактериальными антигенами было предложено в качестве суррогатного маркера индуцированного вакциной защитного иммунитета 14, 18, 19. Пролиферация Т-клеток, индуцированная этой процедурой, , т.е. трансформация лимфоцитов анализ, хорошо коррелирует с реактивностью туберкулиновой кожной пробы, но согласно нескольким исследованиям, это более чувствительный индикатор микобактериальной сенсибилизации 20,21.Однако информации о взаимосвязи между туберкулиновой кожной пробой и суррогатными маркерами защитного иммунитета у субъектов, вакцинированных БЦЖ, мало.

Для оценки значения туберкулиновой кожной пробы как индикатора защитного иммунного ответа против туберкулеза у лиц, вакцинированных БЦЖ, пролиферация лимфоцитов и продукция IFN-γ, индуцированная микобактериальными антигенами в сопоставимых группах туберкулин-отрицательных и туберкулин-положительных медицинских работников.

Материалы и методы

Исследуемая популяция

Туберкулиновая кожная проба была проведена у 381 медицинского работника, вакцинированного БЦЖ при рождении. Среди них 325 (85%) женщин. Средний возраст составлял 38,7 года. Восемьдесят пять человек (22%) были туберкулин-отрицательными, т.е. . с уплотнением диаметром <6 мм, и 296 (78%) были положительными. Через год после первоначальной процедуры тестирования туберкулин-отрицательные субъекты были повторно протестированы перед началом исследования.Одиннадцать из оставшихся отрицательных (0–5 мм) были сопоставлены по возрасту и полу с 11 субъектами с крупными положительными реакциями (15–20 мм).

Средние туберкулиновые реакции двух исследуемых групп составили 2,2 и 15,8 мм соответственно. Средний возраст 22 испытуемых составлял 38,0 лет (от 27 до 46 лет), из них 18 (82%) составляли женщины. Таким образом, соотношение полов и средний возраст этих 22 субъектов существенно не отличались от исходной группы из 381. Субъекты были здоровыми шведами, без сопутствующих заболеваний, и ни один из них не был беременным или кормящим грудью.Все были вакцинированы БЦЖ при рождении, и у всех был шрам БЦЖ. Было получено информированное согласие, и исследование было одобрено местным этическим комитетом.

Кожные пробы

Внутрикожная инъекция 2 туберкулиновых единиц производного туберкулина очищенного протеина (PPD) RT23 (Statens Seruminstitut, Копенгаген, Дания) была сделана в тыльную сторону правого предплечья. Реакции считывали через 48–72 ч. Индурация <6 мм была признана отрицательной.

Микобактериальные антигены

Помимо туберкулина PPD RT23, использовали антигены из двух штаммов Mycobacterium tuberculosis (4610/91 и 5109/95: Институт медицинской микробиологии Гетеборгского университета, Швеция). Эти штаммы были выделены от шведских пациентов в 1991 и 1995 годах, соответственно, и продемонстрировали все характерные свойства M. tuberculosis . Их выращивали на среде Саутона при 37 ° C в течение 6 недель. Стерильный фильтрат культуры готовили из штамма 5109/95, а стерильную суспензию целых клеток, гомогенизированную обработкой ультразвуком, получали из штамма 4610/91.

Анализ трансформации лимфоцитов

Анализ выполняли одновременно для субъектов в каждой подобранной паре с использованием модификации ранее опубликованного метода 22. Для стимуляции микобактериальными антигенами в микротитровальные планшеты добавляли 1 × 10 ⁶ клеток. Для стимуляции положительным контролем конканавалином А (ConA) использовали 1 × 10 ⁵ клеток. Добавляли трижды каждого из следующих стимуляторов: туберкулин PPD RT23, 10 мкг · мл ^-1 ; целые клетки М.туберкулез , 10 мкг · мл ^-1 ; фильтрат культуры M. tuberculosis , концентрация белка 10 мкг · мл ^-1 ; Con A, 25 мкг · мл ^-1 . Три лунки без стимулятора использовали в качестве отрицательного контроля. Затем клетки инкубировали в среде для культивирования клеток в 5% диоксиде углерода (CO ₂ ) при 37 ° C в течение 6 дней. Супернатант культуры (150 мкл) удаляли из каждой лунки и замораживали при -70 ° C для последующего анализа содержания цитокинов. Добавляли свежую среду и стимулятор (150 мкл), и планшет инкубировали еще 24 часа.Затем добавляли ³ H-тимидин и инкубировали планшет в течение ночи. Клетки собирали и радиоактивность измеряли в количестве импульсов в минуту (имп / мин) с использованием β-счетчика (Matrix 96, Packard Instrument Co., Inc., Чикаго, Иллинойс, США). Пролиферативный ответ рассчитывали как среднее геометрическое число импульсов в минуту для трех повторов. Пролиферативные ответы стимулированных культур представлены как разница (Δcpm) между поглощением радиоизотопа в стимулированных культурах и нестимулированных контрольных культурах.

Анализ цитокинов

IFN-γ измеряли в супернатантах от клеток, стимулированных ранее упомянутыми микобактериальными антигенами и Con A, а также в супернатантах от нестимулированных клеток, используя методику иммуноферментного сэндвич-анализа (ELISA), как описано Quarfordt et al. . 22. Максимальные указанные значения были> 10 000 единиц · мл ^-1 . В расчетах эти значения были приняты равными 10 000 ед. · Мл ⁻¹ .

Статистический анализ

22 субъекта были подобраны попарно, и из-за известных больших различий в иммунологических анализах каждую пару анализировали одновременно. Статистические расчеты основывались на различиях внутри пар. Для сравнения между группами использовался одновыборочный тест Вилкоксона. Значение p <0,05 считалось значимым. Были отобраны только субъекты с небольшими отрицательными реакциями и крупными положительными реакциями, чтобы увеличить возможность обнаружения существенной разницы между двумя группами.

Результаты

Анализ трансформации лимфоцитов

Пролиферация мононуклеарных клеток периферической крови из вакцинированных бациллой Кальметта-Герена (БЦЖ) медицинских работников с положительными (•) и отрицательными (○) туберкулиновыми кожными пробами после стимуляции in vitro стимуляцией очищенным производным туберкулина (PPD) RT23, тепло -убил клеток Mycobacterium tuberculosis и фильтрат культуры M. tuberculosis . Индивидуальные значения пролиферативных ответов представлены как разница в количестве импульсов в минуту (Δcpm) между поглощением радиоизотопа в стимулированных культурах и в нестимулированных контрольных культурах.Среднее значение в каждой группе указано горизонтальной линией. ***: p <0,001.

Производство цитокинов

В нестимулированных культурах уровни IFN-γ были близки к нулю. Продукция IFN-γ после стимуляции микобактериальными антигенами показана на рисунке 2⇓. В туберкулин-отрицательной группе медиана продукции IFN-γ была значительно выше, чем в нестимулированных культурах (700, 700 и 600 единиц · мл ^-1 , соответственно, для трех стимуляций антигеном).Однако соответствующая продукция IFN-γ в туберкулин-положительной группе была в 7-10 раз выше, чем в туберкулин-отрицательной группе (5 500, 6700 и 4400 единиц · мл ^-1 , p <0,001 соответственно). Различия между тремя антигенами в их способности индуцировать продукцию IFN-γ не были значительными.

Концентрации гамма-интерферона (IFN-γ) в супернатантах культур мононуклеарных клеток периферической крови от вакцинированных бациллой Кальметта-Герена (БЦЖ) медицинских работников с положительными (•) и отрицательными (○) туберкулиновыми кожными пробами после in vitro стимуляция очищенным производным туберкулина (PPD) RT23, убитыми нагреванием клетками Mycobacterium tuberculosis и культуральным фильтратом из M.Туберкулез . Среднее значение в каждой группе указано горизонтальной линией. ***: p <0,001.

Обсуждение

В этом исследовании пролиферация лимфоцитов и продукция IFN-γ, индуцированные микобактериальными антигенами, были значительно сильнее в группе туберкулин-положительных людей, чем в подобранной группе туберкулин-отрицательных людей, что указывает на более сильный иммунный ответ защитного Th2-типа. в туберкулин-положительной группе.

Tuberculin PPD RT23 был приготовлен в 1958 году из нескольких штаммов, включая штамм M. tuberculosis типа h47RV, выделенный в 1905 году. Учитывая возраст этих антигенов, препараты из двух штаммов, выделенных от шведских пациентов в 1990-х годах, также были включены для того, чтобы более точно отражать клинически значимые иммунологические ответы субъектов. Однако иммуностимулирующий эффект PPD RT23 был не меньше, чем у недавно выделенных микобактериальных антигенов.

Общая программа вакцинации новорожденных БЦЖ действовала в Швеции до 1975 года. Все участники настоящего исследования были вакцинированы при рождении. Семеро были ревакцинированы, в основном> 20 лет назад. Многие исследования показали значительное снижение туберкулиновой реактивности с течением времени после вакцинации БЦЖ 23. Тем не менее, несмотря на низкую заболеваемость туберкулезом в Швеции, 78% из 381 медицинского работника, прошедшего первоначальное тестирование, имели положительные туберкулиновые реакции. Перекрестные реакции с иммунным ответом на нетуберкулезные микобактерии, вероятно, способствовали этим реакциям 24, а также результатам in vitro в настоящем исследовании.Было высказано предположение, что такие реакции также вызывают защиту от туберкулеза 25, 26.

In vitro недавно были опубликованы результаты, подтверждающие концепцию антиген-специфической продукции IFN-γ как точного индикатора реакции на вакцину. Таким образом, BCG-индуцированная трансформация лимфоцитов и ответы IFN-γ развивались быстрее у субъектов, ранее сенсибилизированных к микобактериальным антигенам, чем у несенсибилизированных субъектов 14, что и следовало ожидать в связи с ответом Т-клеток памяти.Кроме того, исследование, проведенное в Южной Индии, показало, что, несмотря на конверсию туберкулина после вакцинации БЦЖ, ответы in vitro на не увеличились значительно, что согласуется с отсутствием эффективности БЦЖ, ранее продемонстрированной в той же области 27.

Недавно опубликованный обзор популяций, в основном не вакцинированных БЦЖ 28, показал самый высокий риск туберкулеза у субъектов с наиболее выраженными реакциями на туберкулин. Однако в нескольких исследованиях наименьший риск был зарегистрирован не среди лиц с наименьшими реакциями, а среди субъектов с туберкулиновыми реакциями низкой степени.Напротив, обзор контролируемых испытаний вакцинации БЦЖ в различных частях мира не показал взаимосвязи между средней степенью конверсии туберкулина в каждом испытании и эффективностью штаммов БЦЖ 11. Однако тенденция к положительной корреляции между чувствительностью к туберкулину и защита была обнаружена в каждом изученном штамме вакцины 11, , например, . в испытании Британского совета медицинских исследований 10 и испытании в западных США 29.

Представленные результаты, указывающие на взаимосвязь между реактивностью туберкулина, индуцированной вакциной, и суррогатными маркерами защитного иммунитета, соответствуют результатам исследования из США, проведенного через 3 месяца после вакцинации БЦЖ 30, а также через 1–3 года после вакцинации 19 .Напротив, ранее упомянутое исследование в Южной Индии 27 не показало такой взаимосвязи, указав на решающее значение демографических и экологических условий для эффективности вакцинации БЦЖ, а также на значимость туберкулиновой реакции.

На основании крупномасштабного исследования вакцины БЦЖ, проведенного в Малави 12, исследователи пришли к общему выводу, что поствакцинальная реактивность туберкулина не коррелирует с защитой от туберкулеза. Однако в таких странах, как Малави, где БЦЖ не добавляет защиты от туберкулеза и существенно не увеличивает реактивность туберкулина, связь между реакциями туберкулина после вакцинации и защитным иммунитетом против туберкулеза, вызванным вакциной БЦЖ, маловероятна.Напротив, такая взаимосвязь с большей вероятностью будет существовать в таких странах, как Скандинавия, где как эффективность БЦЖ, так и показатели конверсии туберкулина после вакцинации 31 высоки. Предполагается, что в таких условиях может существовать взаимосвязь между реакцией на туберкулин после вакцинации и защитой от туберкулеза, и что результаты, полученные в таких странах, как Малави, не могут использоваться для общих выводов по этому вопросу.

Защитный иммунитет против туберкулеза, по всей вероятности, более сложен, чем просто способность вызвать ответ Т-хелпера 1.Однако представленные результаты и исследования, рассмотренные в этой статье, подтверждают традиционную практику рассмотрения туберкулиновой кожной пробы как индикатора защиты от туберкулеза у субъектов, вакцинированных бациллой Кальметта-Герена. Для защиты здоровья персонала, исключение туберкулин-отрицательных медицинских работников из ухода за пациентами с положительным мазком мокроты представляется целесообразным, особенно в случаях туберкулеза с множественной лекарственной устойчивостью. Эти выводы относятся к условиям, подобным тем, которые представлены в настоящем исследовании, но могут не применяться в целом.

Благодарности

Авторы благодарят Б. Андерссона за ценную помощь в иммунологических исследованиях, I-M. Доше за ее умелую и самоотверженную работу, М. Магнуссону и М. Йоргенсену за помощь и обсуждения, а также П. Нордину за ценные статистические советы.

• Получено 5 октября 2000 г.
• Принято 4 апреля 2001 г.

Список литературы

1. ↵

   Бирхауг К. Вакцинация БЦЖ в Скандинавии.Двадцать лет непрерывной вакцинации от туберкулеза. Ам Рев Туберк, 1947; 15: 234–249.

2. ↵

   Rosenthal SR. Иммунитет при туберкулезе В : Rosenthal SR. Вакцина БЦЖ: рак против туберкулеза, Литтлтон, Массачусетс, издательство PSG Publishing Company, Inc., 1980; С. 1––13.

3. ↵

   Heimbeck J. Туберкулез у медсестер больниц. Бугорок 1936; 18: 97–99.

4. ↵

   Шил О.Туберкулез мягкий медицинский студенческий препарат и вакцинация с БЦЖ. Норд Мед 1935; 9: 841–846.

5. ↵

   Бюро исследований туберкулеза ВОЗ. Некоторые характеристики чувствительности к туберкулину, вызванной БЦЖ. Bull World Health Organ 1955; 12: 123–141.

6. Турок JL. Связь между гиперчувствительностью замедленного типа и клеточным иммунитетом. J Royal Soc Med 1979; 72: 243–245.

7. ↵

   Shaaban MA, Abdul Ati M, Bhahr GM, Stanford JL, Lockwood DNJ, McManus IC.Ревакцинация БЦЖ: ее влияние на кожные пробы у кувейтских старшеклассников. Eur Respir J 1990; 3: 187–191.

8. ↵

   Данненберг AM, мл. Гиперчувствительность замедленного типа и клеточный иммунитет в патогенезе туберкулеза. Immunol Today 1991; 12: 228–233.

9. ↵

   Mackaness GB. Гиперчувствительность замедленного типа и ее значение В : Международное разбирательство нет. 14: Государства вакцинации против туберкулеза в 1971 г. Вашингтон Д.С., DHEW, 1971; С. 69––89.

10. ↵

    Hart PD, Sutherland I, Thomas J. Иммунитет, обеспечиваемый эффективными вакцинами БЦЖ и цельной палочкой, в отношении индивидуальных вариаций индуцированной чувствительности к туберкулину и технических вариаций вакцин. Бугорок 1967; 48: 201–210.

11. ↵

    Comstock GW. Определение эффективной вакцины против туберкулеза. Am Rev Respir Dis 1988; 138: 479–480.

12. ↵

    Fine PEM, Sterne JAC, Pönnighaus JM, Rees RJW. Гиперчувствительность замедленного типа, микобактериальные вакцины и защитный иммунитет. Ланцет 1994; 344: 1245–1249.

13. ↵

    Mehra V, Gong JH, Iyer D, et al. Иммунный ответ на рекомбинантные микобактериальные белки у пациентов с туберкулезной инфекцией и заболеванием. Журнал Infect Dis 1996; 174: 431–434.

14. ↵

    Равн П., Боесен Х., Кларлунд Педерсен Б., Андерсен П.Т-клеточные ответы человека, индуцированные вакцинацией Mycobacterium bovis bacillus Calmette-Guérin. J Immunol 1997; 158: 1949-1955.

15. Равн П., Педерсен Б.К. Mycobacterium avium и специфическая для PPD цитотоксичность, опосредованная CD4 + лимфоцитами здоровых ВИЧ-серопозитивных и серонегативных людей. J. Acquir Immune Defic Syndr Hum Retrovirol 1996; 12: 433–441.

16. Newport MJ, Huxley CM, Huston S, et al. Мутация в гене рецептора интерферона-γ и восприимчивость к микобактериальной инфекции. N Engl J Med 1996; 335: 1941–1949.

17. ↵

    Condos R, Rom WN, Schluger NW. Лечение туберкулеза легких с множественной лекарственной устойчивостью с помощью интерферона-γ в аэрозоле . Ланцет 1997; 349: 1513–1515.

18. ↵

    Lein AD, von Reyn CF. In vitro Клеточные и цитокиновые ответы на микобактериальные антигены: применение для диагностики туберкулеза и оценки ответа на микобактериальные вакцины.J Med Sci 1997; 313: 364–371.

19. ↵

    Hoft DF, Tennant JM. Стойкость и усиление бацилл-индуцированной гиперчувствительности замедленного типа. Энн Интерн Мед 1999; 131: 32–36.

20. ↵

    Pabst HF, Godel JC, Spady DW, McKechnie J, Grace M. Проспективное испытание времени вакцинации против бациллы Кальметта-Герена у младенцев канадской кри. Am Rev Respir Dis 1989; 140: 1007–1011.

21. ↵

    Smith JA, Reichman LB.Трансформация лимфоцитов. Помощь в диагностике туберкулеза у пациентов с нереактивными кожными пробами. Am Rev Respir Dis 1972; 106: 194–201.

22. ↵

    Quarfordt I, Riise GC, Larsson S, et al. Иммунологические исследования крови и жидкости бронхоальвеолярного лаважа у больных хроническим бронхитом с рецидивирующими инфекционными обострениями. Eur Respir J 1998; 11: 46–54.

23. ↵

    Kröger, Katila ML, Korppi M, Brander E, Pietikäinen M.Быстрое снижение реактивности туберкулиновой кожной пробы в дошкольном возрасте после вакцинации новорожденных. Acta Pediatr 1992; 1: 678–681.

24. ↵

    Larsson LO, Bentzon MW, Lind A, et al. Чувствительность к сенситинам и туберкулину у шведских детей. Часть 5: исследование школьников, проживающих в сельской местности. Бугорок 1993; 74: 371–376.

25. ↵

    ПЭМ мелкий. Вариации защиты с помощью БЦЖ: последствия и для гетерологичного иммунитета.Ланцет 1995; 346: 1339–1345.

26. ↵

    Hoft DF, Brown RM, Roodman ST. Вакцинация бациллой Кальметта-Герена усиливает реакцию γδ Т-клеток человека на микобактерии, что свидетельствует о фенотипе, подобном памяти. J Immunol 1998; 161: 1045–1054.

27. ↵

    Das SD, Narayanan PR, Kolappan C, Colston MJ. Цитокиновый ответ на вакцинацию против бациллы Кальметта Герена в Южной Индии. Int J Tuberc Lung Dis 1998; 2: 836–843.

28. ↵

    Watkins RE, Brennan R, Plant AJ. Туберкулиновая реактивность и риск туберкулеза: обзор. Int J Tuberc Lung Dis 2000; 4: 895–903.

29. ↵

    Аронсон Дж. Д., Палмер CE. Опыт применения вакцины БЦЖ в борьбе с туберкулезом среди североамериканских индейцев. Представитель общественного здравоохранения, 1946 г., 61: 802–820.

30. ↵

    Кемп Е.Б., Белше РБ, Хофт ДФ.Иммунные ответы, стимулированные чрескожной и внутрикожной бациллой Кальметта-Герена. J Infect Dis 1996; 174: 113–119.

31. ↵

    Beskow R, Bleiker M, Dahlström G, Mellbin T., Sjögren I., Styblo K. Чувствительность к туберкулину у шведских школьников, вакцинированных БЦЖ при рождении. Лакартиднинген, 1981; 77: 118–120.

(PDF) Кожная реакция на БЦЖ у здоровых детей с отрицательным результатом Манту

BMC Infectious Diseases 2005, 5:19 http: // www.biomedcentral.com/1471-2334/5/19

Страница 4 из 5

(номер страницы не для цитирования)

определяет характер реакции БЦЖ, сравнивая ранее вакцинированные

детей с невакцинированными детьми.

Как уже упоминалось, было проведено очень мало исследований по тесту БЦЖ

у детей, ранее вакцинированных БЦЖ.

Одно из таких исследований проведено PMUdani [7]: Тест БЦЖ при диагнозе

туберкулеза у детей — Indian Pediatric,

(1982), приложение, касающееся «Теста БЦЖ у детей, которые

ранее получали БЦЖ имеется в наличии.«В этом исследовании он

пришел к трем группам выводов.

Первый

Отрицательный тест БЦЖ: младенец или ребенок могут не получить никакой реакции

из-за вакцинации БЦЖ, и организм ведет себя как

, если не была сделана предварительная иммунизация Предыдущий вакцина BCG vac-

, введенная при рождении, не повлияла на иммунный ответ

ребенка

Второй

Сильно положительный тест BCG, классическая ускоренная реакция

.Эта реакция аналогична реакции, наблюдаемой у пациента

, страдающего туберкулезом.

Третий

Умеренно положительная реакция. При этой реакции у ребенка может появиться уплотнение

от 6 до 9 мм. Он отнес третий тип реакции

из-за предшествующей вакцинации БЦЖ.

В настоящем исследовании большая часть (около 84%) преувеличенного ответа на тест

BCG в группе I имела реакцию между 6–8

мм, аналогичную реакции третьего типа, о чем свидетельствует

Удани [7].В исследовании, проведенном Удани [7], не было упомянуто

критериев исключения и исключения из исследования —

, и, вероятно, в исследование были включены все дети, которым ранее была сделана вакцинация

БЦЖ. Как упоминалось ранее, в настоящем исследовании сравниваются результаты теста

БЦЖ у детей, вакцинированных БЦЖ, и детей, не вакцинированных БЦЖ,

детей.

Хотя 50 мальчиков и 50 девочек, которые были включены в данное исследование

, не были отобраны в точности на основе формальных процедур случайной выборки

, вероятность смещения

невелика.Несмотря на отсутствие критерия включения, за исключением

с массой тела более 80% и исключения любого случая

с любым заболеванием, мы понимаем, что отсутствие

формального случайного распределения является ограничением для исследования.

Однако очень значимые результаты (p-значение <

0,00001) значительно перекрывают ограничение.

Диагностировать туберкулез у детей непросто. Как и у взрослых,

не всегда следует думать о терапевтических испытаниях у детей, так как

лекарства очень токсичны, а побочные эффекты, такие как рит Optic Neu-

, нелегко диагностировать у детей.Итак, Diagnos-

Лечение и лечение туберкулеза у детей — это палка о двух концах.

В наши дни ПЦР и другие новые исследования имеют

, которые стали полезными, но они просто добавляют к старому режиму исследования

и не позволяют полностью прогнозировать болезнь на

самостоятельно. Поэтому для постановки диагноза туберкулеза у детей требуется

больших клинических навыков и правильная интерпретация исследований

.

Нет сомнений в том, что у некоторых детей

может быть трудно решить, является ли тест БЦЖ положительным из-за предшествующей вакцинации

БЦЖ или из-за естественной туберкулезной инфекции.

Чрезмерный диагноз туберкулеза обычно делается с использованием

преувеличенного ответа на тест БЦЖ в качестве параметра для принятия решения

противотуберкулезная терапия у пациентов, у которых в противном случае

анамнез, клинические особенности, чувствительность туберкулиновой пробы, рентген и т. д. не полностью указывают на болезнь Коха.

Настоящее исследование показывает, что у нормальных здоровых детей

может быть слегка преувеличенный ответ на тест БЦЖ, т. Е. Индукция рациона до 8 мм из-за предшествующей вакцинации БЦЖ.

Таким образом, пациенты, которые были иммунизированы вакциной БЦЖ при рождении

и дали положительный результат теста БЦЖ, и у которых другие параметры

для диагностики туберкулеза не внушают доверия —

, возможно, получают ненужные противотуберкулезные препараты

терапия. Положительный тест может иметь значение после сопоставления его

с возрастом ребенка, питанием, размером туберкулиновой пробы

уплотнения, историей контакта и симптомами для диагностики

и проведения химиотерапии [1].

Заключение

78% (39 из 50) детей в группе I (предыдущая вакцинация БЦЖ —

) и 18% (9 из 50) детей в группе II (предыдущая вакцинация

БЦЖ не проводилась) преувеличенный ответ BCG

; определяется как уплотнение, большее или равное 6

мм. Статистическая разница (значение p <0,00001) между

Группой I и Группой II была очень значимой. 72% детей

в группе I, которые показали преувеличенный ответ на БЦЖ,

имели уплотнение в диапазоне 6–8 мм.Только 6% детей

показали уплотнение размером 9, 10 или более 10 мм. У 22% из

детей в группе I уплотнение было менее 6 мм. Дети

детей в группе II, показавшие преувеличенный ответ на БЦЖ, имели уплотнение

размером 6 или 7 мм. Различия между показаниями мужчин

и женщин в каждой из двух групп были статистически недостоверными. Показания 1-го и 3-го суток были статистически на

более значимыми по сравнению с показаниями на 7-й и 6-недельный периоды —

раза.Все дети в группе II, показывающей преувеличенный ответ на БЦЖ

и в группе I, показавшую уплотнение на 10 мм или на

больше, были обследованы с помощью рентгена грудной клетки, чтобы исключить туберкулез

. Даже в отсутствие предшествующей вакцинации БЦЖ около

нормальных здоровых детей из группы II демонстрировали слегка завышенный ответ БЦЖ на

. Вероятно,

можно объяснить туберкулезной инфекцией, не требующей лечения. У значительного числа (78%) здоровых детей

, прошедших предыдущую вакцинацию БЦЖ, которые были отрицательными по Манту

и получили БЦЖ в качестве «диагностического теста» или как повторную вакцинацию

, показали преувеличенный ответ БЦЖ.Поскольку эти

детей здоровы, преувеличенный ответ БЦЖ в такой

PPD Skin Test Article

Введение

Туберкулез остается серьезной проблемой общественного здравоохранения и основной причиной заболеваемости и смертности во всем мире, особенно в развивающихся странах. Туберкулез — это смертельная бактериальная инфекция, вызываемая бактерией Mycobacterium tuberculosis, — очень заразной капельной инфекцией, которая в первую очередь поражает легкие.Однако он может поражать любую часть тела, включая кости, суставы, центральную нервную систему и т. Д. Лечение туберкулеза доступно и эффективно.

Хотя общая заболеваемость и распространенность туберкулеза снижаются, заболеваемость туберкулезом с множественной лекарственной устойчивостью неуклонно растет. На азиатов и выходцев из Латинской Америки приходится более половины новых случаев туберкулеза, причем наибольшая заболеваемость наблюдается в Индии, Китае, Индонезии, Пакистане, Нигерии и Южной Африке.Однако в Соединенных Штатах последние тенденции показывают значительное снижение заболеваемости этой инфекцией. [1]

Активная и латентная инфекция ТБ

У человека с активной инфекцией обычно проявляются симптомы пораженной части и конституциональные симптомы, такие как необъяснимая потеря веса, лихорадка, усталость, потеря аппетита и ночная потливость. Однако латентный ТБ протекает бессимптомно и не заразен.

Ранняя диагностика активного туберкулеза имеет решающее значение для своевременного лечения болезни и предотвращения ее распространения.Латентная инфекция ТБ протекает неинфекционно и бессимптомно и широко распространена во всем мире (33%). Поскольку эта популяция несет риск реактивации в состояниях с ослабленным иммунитетом и развития активного туберкулеза, который является симптоматическим и очень заразным, латентный туберкулез является важной проблемой общественного здравоохранения. Риск прогрессирования ЛТИ до активной формы заболевания максимален в первые два года после заражения. Прогрессирование, выявление и лечение латентных случаев ТБ важны для борьбы с туберкулезом и снижения бремени болезни.

Риск прогрессирования ЛТИ снижается с возрастом, так как с возрастом повышается иммунитет. Риск прогрессирования у младенцев составляет 50%, а к 10 годам он снижается до 1–2% [2].

Скрининговые тесты на ТБ

Два скрининговых теста могут продемонстрировать наличие ТБ инфекции:

• Кожная проба PPD (проба Манту / кожная туберкулиновая проба) [3]
• IGRA (анализ высвобождения гамма-интерферона) [4]

Оба этих теста оценивают клеточный иммунитет, который обычно возникает, когда человек подвергается воздействию бактерий ТБ.Кожная реакция — это ответ, опосредованный Т-лимфоцитами (клеточный иммунитет). Однако положительный результат этих тестов не позволяет различить латентный и активный туберкулез. Следовательно, оценка симптомов и дальнейшее обследование (рентгенограмма грудной клетки, анализ мокроты на кислотоустойчивые бациллы, компьютерная томография) необходимы для выявления активной инфекции.

Не существует окончательного теста для диагностики ЛТИ, который является клиническим диагнозом. Диагноз ЛТИ ставится на основании анамнеза предшествующей ТБ инфекции и исключает активное заболевание ТБ.

Кожная проба PPD / Кожная проба на туберкулез

Проба на очищенное производное белка (кожная проба PPD), проводимая по методу Манту, представляет собой кожную реакцию гиперчувствительности IV типа на «туберкулин». Таким образом, она также известна как кожная туберкулиновая проба. (Кожная проба ТКП) и проба Манту. Этот тест был разработан Кохом и в дальнейшем развит Чарльзом Манту, который описал внутрикожную технику в 1912 году.

Туберкулин, используемый в тесте, экстрагируется из культур микобактерий туберкулеза и используется как очищенное производное белка.Однако используется стандартизированный PPD-S, который представляет собой туберкулезную микобактерию (нетуберкулезные Mycobacterium обозначаются буквой, отличной от S). Результаты этого теста интерпретируются путем измерения реакции гиперчувствительности (гиперчувствительности замедленного типа) на очищенное производное туберкулина белка, полученное из Mycobacterium tuberculosis . Пик реакции уплотнения наступает через 24 часа после пробной инъекции. Уплотнение кожи в месте инъекции происходит вторично по отношению к клеточной инфильтрации.

Для получения положительного результата теста PPD требуется от 6 до 8 недель после контакта с бактериями. Для этого теста требуется два посещения. Первое посещение для проведения теста и второе посещение для ознакомления с результатами теста через 48–72 часов после размещения теста. [5]

Сбор образцов

Этот тест проводится на коже пациента, образцы не требуются. [6]

Процедуры

Проведение кожного теста PPD

Утвержденные FDA туберкулиновые антигены PPD доступны для использования в этом тесте в США.За пределами США могут использоваться некоторые другие туберкулиновые антигены, такие как состав RT 23. Дозировка препаратов PPD-S и RT 23 различается. Дозировка препарата PPD-S составляет 5 единиц в 0,1 мл. У пациентов с печеночной и почечной недостаточностью коррекции дозы не требуется.

Согласно CDC, этот тест проводится с использованием «техники Манту», при которой 0,1 мл раствора, содержащего 5 единиц очищенного производного туберкулина, вводится во внутреннюю поверхность предплечья внутрикожным путем.Его следует вводить на расстоянии не менее 2 дюймов от локтя, запястья или любого другого места инъекции. Согласно рекомендациям CDC 2005, его можно вводить в заднюю часть плеча, если нельзя использовать ни одну руку.

Этот тест проводится с использованием туберкулинового шприца объемом 1 см3 и крошечной иглы (менее полдюйма), при этом конус иглы шприца направлен вверх во время инъекции. Иглу следует вводить медленно, под углом от 5 до 15 градусов, при этом скос иглы должен быть виден под кожей.Возвышение кожи (диаметром от 6 до 10 мм), известное как «волдырь», образуется, когда небольшое количество раствора PPD вводится внутрикожно, обеспечивая правильное введение. В случае неудачной попытки образования волдыря, тест необходимо немедленно повторить на другом месте, по крайней мере, на 5 см / 2 дюйма от места первоначального введения, и отметить место второй инъекции.

Необходимо документировать место инъекции, дату и время проведения теста, лицо, проводившее тест, номер партии продукта и производителя.Пациенту следует избегать царапин и трения об этом месте, а также держать его открытым и чистым. Поскольку на туберкулин возможны аллергические реакции, для их лечения должен быть доступен адреналин (1 мг / мл).

Считывание кожного теста PPD

Наблюдается и измеряется реакция гиперчувствительности IV типа (замедленного типа) на введенный туберкулиновый антиген PPD. Реакция начинается через 5-6 часов, с максимальным эффектом через 48-72 часа, после чего она начинает спадать.Следовательно, подходящее время для чтения теста — через 48-72 часа после установки внутрикожного теста. В месте инъекции видны эритема и уплотнение. Диаметр уплотнения измеряют перпендикулярно длинной оси предплечья, разграничивают и записывают в мм. Эритема или покраснение не имеют диагностической ценности, и их следует игнорировать. Индурация — это пальпируемая припухлость, которую измеряют в поперечном направлении при осмотре и пальпации.

Это чувствительный ко времени тест. Тесты, которые читаются с опозданием, не являются точными, поскольку они, как правило, недооценивают размер кожной реакции.Таким образом, надежность теста ставится под угрозу, а результаты сомнительны. Во избежание этого рекомендуется повторное тестирование, если реакция не прочитана вовремя. Второй тест можно провести как можно скорее. Однако в случае повторения тест предпочтительно проводить в течение 7 дней после первоначального теста, чтобы избежать эффекта усиления. Кроме того, второй тестовый участок должен находиться в другом месте тела, например, на другой руке.

Для правильного проведения и внимательного изучения кожного теста PPD требуется стандартизация этой процедуры тестирования, обучение персонала и контроль.Хотя кожная проба PPD широко используется во всем мире, ее интерпретация является сложной задачей [3].

Показания

Скрининг на туберкулез

• Исходная оценка индивидуального риска ТБ
• Оценка симптомов туберкулеза
• Скрининговые тесты на ТБ (кожная проба на ТБ или анализ крови на ТБ)
• Дополнительная оценка на ТБ, если требуется.

Скрининговые тесты в плановом порядке не рекомендуются.Скрининговый тест должен проводиться в популяции высокого риска для лечения латентного или активного заболевания в случае обнаружения. Согласно рекомендациям CDC 2019 по скринингу для медицинского персонала , необходимо проводить индивидуальную базовую оценку риска ТБ без рутинного ежегодного скрининга, за исключением случаев профессионального риска или воздействия.

В соответствии с рекомендациями 2017 года по диагностике активного или латентного ТБ, опубликованными CDC, ATS и IDSA, показания для скрининга на ТБ включают:

• Риск нового заражения из-за контакта с ТБ

-Сотрудники и жители приютов для бездомных и исправительных учреждений, а также некоторые медицинские работники (пульмонологи, респираторные терапевты) нуждаются в серийном обследовании с учетом высокого риска заражения.

— Близкие и случайные (менее 4 часов в неделю контакта) контакты с нелеченым активным туберкулезом требуют однократного обследования.

• Лица с ЛТИ с повышенным риском прогрессирования заболевания.

-Высокий риск реактивации (в шесть раз выше, чем в норме). Тяжелые состояния с ослабленным иммунитетом (злокачественные новообразования, химиотерапия, трансплантация органов, ВИЧ-инфекция, иммуносупрессивные методы лечения) и свидетельства излеченного туберкулеза на рентгенограмме грудной клетки.

-Умеренный риск реактивации (от 3 до 6 раз по сравнению с нормальным) -Лица с диабетом и кортикостероидной терапией с высокой распространенностью туберкулеза, i.е., бездомные, внутривенные потребители наркотиков, иммигранты из районов с высокой распространенностью, контактировавшие с активным туберкулезом

— Немного повышенный риск реактивации (риск в 1,5–3 раза по сравнению с нормальным) — люди с недостаточным весом, курильщики и с признаками небольших гранулем на груди рентгенограмма. [7]

Для скрининга на ТБ используются два теста: кожная проба PPD и IGRA. Выбор тестов основан на рекомендациях CDC, ATS и IDSA.

• Кожный тест PPD предпочтительнее IGRA для серийного тестирования людей, которые должны проходить регулярное тестирование.Результат повторного тестирования IGRA сложно интерпретировать.
• IGRA предпочтительнее кожных тестов PPD, когда существует низкий промежуточный риск прогрессирования от латентного к активному заболеванию, высокая вероятность того, что пациенты не вернутся для прохождения теста PPD, предыдущая вакцинация БЦЖ или предыдущая история нетуберкулезной инфекции .
Тест
• PPD можно использовать в качестве альтернативы, когда IGRA недоступен или слишком дорог.
• Либо тест, PPD, либо IGRA можно использовать, если есть высокий риск перехода в активную форму заболевания.
• Двойное тестирование (IGRA и PPD в любом порядке, если первоначальный тест положительный) проводится для лиц с низким уровнем риска. Закон требует тестирования на латентную туберкулезную инфекцию и не имеет медицинских показаний.
• За положительным PPD следует тестирование IGRA для подтверждения наличия инфекции. Тем не менее, IGRA следует сдать в течение трех дней с момента первоначальной сдачи экзамена. Лечение ЛТИ предлагается лицам с положительными результатами обоих тестов.

Показания после контакта для скрининга и тестирования PPD

Согласно обновленному руководству CDC 2019 , кожная проба на ТБ у медицинского персонала с известным воздействием:

• Предыдущий отрицательный результат теста на ТБ — немедленное тестирование и повторное тестирование в От 8 до 10 недель после известного контакта.
• Документально подтвержденный предыдущий положительный кожный тест — повторный тест не требуется. Им лучше пройти обследование на наличие симптомов туберкулеза. Если у них есть какие-либо симптомы, их следует дополнительно обследовать на туберкулез.

Возможный диагноз

Положительная кожная реакция в тесте PPD может возникнуть в:

• Активная туберкулезная инфекция
• Туберкулез в прошлом (латентная туберкулезная инфекция)
• Вакцинация БЦЖ в прошлом (живой аттенуированный штамм микобактерий)
• Заражение различными нетуберкулезными инфекциями Микобактерии

Нормальные и критические результаты

PPD Кожный тест. Интерпретация на основе рекомендаций CDC.

Результат PPD-теста положительный или отрицательный.Однако размер отсечки диаметра уплотнения (5 мм, 10 мм и 15 мм) для положительного результата теста зависит от определенных факторов риска.

По мере увеличения диаметра чувствительность этого теста снижается, а специфичность увеличивается. Например, чувствительность этого теста для положительности отсечки диаметром 5 мм является самой высокой, тогда как положительность отсечки диаметром 15 мм является более специфичной.

Индурация 5 мм и более считается положительной у:

• Лица с ослабленным иммунитетом (например, длительно принимающие стероиды, эквивалентные преднизону ≥15 мг / день в течение ≥1 месяца, иммунодепрессанты и т. Д.)
• ВИЧ-инфицированных.
• Недавний контакт с больными активным туберкулезом.
• Предыдущие признаки туберкулеза на рентгенограмме грудной клетки, такие как фиброзные изменения.
• Пациенты с трансплантацией органов

Индурация 10 мм или более считается положительной в:

• Иммигрантам из эндемичных стран / стран с высокой распространенностью за последние 5 лет.
• Работники и жители зоны повышенного риска. Например, тюрьмы, дома престарелых и приюты для бездомных.
• Лица, употребляющие инъекционные наркотики.
• Профессиональная микобактериологическая лаборатория
• Дети до четырех лет.
• Хронические заболевания, повышающие риск туберкулеза, включают диабет, почечную недостаточность, злокачественные новообразования и т. Д.
• Младенцы / дети / подростки, относящиеся к категориям повышенного риска.

Индурация 15 мм или более считается положительной в:

• Всегда считается положительной для любого человека.Здоровые люди без факторов риска туберкулеза.
• Пациенты, не соответствующие ни одному из вышеперечисленных критериев [8]

Положительный тест на PPD Кожный тест

Если риск заражения очень высок, тест PPD не нужно повторять. За положительным результатом теста PPD обычно следует оценка симптомов туберкулеза, физический осмотр и рентгенография грудной клетки.

Если нет симптомов ТБ и признаков активной туберкулезной инфекции при физикальном осмотре и рентгенограмме грудной клетки, у пациента, скорее всего, есть латентный ТБ.После выявления туберкулеза следует поощрять лечение латентного туберкулеза. Однако, если клиническая оценка или рентгенограмма грудной клетки положительны, могут быть проведены дополнительные тесты для подтверждения диагноза активного заболевания. Эти тесты включают в себя анализы мокроты, мочи, биопсию ткани и т. Д.

Отрицательный PPD Кожный тест

Если у пациента высокий риск развития активной инфекции, рекомендуется повторить тест после первоначального отрицательного результата теста, чтобы принять решение. возможность пропустить дело.Однако решение принимается с учетом факторов риска.

Повторное тестирование важно в тех случаях, когда первоначальный тест был проведен слишком рано после контакта (<8 недель известного контакта), это очень старая инфекция, при которой иммунный ответ мог ослабнуть. Иногда у пациентов с очень высоким риском повторный тест также дает отрицательный результат из-за отсутствия иммунного ответа. В таких случаях рассматривается индивидуальная оценка и лечение.

PPD Кожная проба Преобразование

Согласно CDC, повторная кожная проба PPD считается положительной, если уплотнение составляет ≥ 10 мм, а уплотнение увеличивается на ≥6 мм по сравнению с предыдущим тестом.Эта интерпретация теста менее чувствительна, но более конкретна.

PPD Skin test Reversion

Это преобразование предыдущих положительных результатов теста, которые меняются на отрицательные, называется «реверсией теста Манту». Это наблюдается у <10% людей, которые были положительными на PPD в предыдущем тесте. . Это можно увидеть в снижении естественного иммунитета (например, у пожилых людей) и когда предыдущий положительный результат PPD был повышенным ответом на двухэтапное тестирование.

Мешающие факторы

Ложноположительная реакция

Поскольку PPD-тест имеет низкую специфичность, люди из группы низкого риска с положительным результатом могут иметь ложноположительные результаты.Кожная проба PPD является ложноположительной, если тест положительный при отсутствии инфекции Mycobacterium tuberculosis . Его можно увидеть в:

• Предыдущая вакцинация БЦЖ
• При инфекциях, вызванных нетуберкулезными бактериями
• Неправильное проведение теста
• Неправильное прочтение / интерпретация теста

Тест IGRA может рассматриваться у лиц, ранее вакцинированных БЦЖ, поскольку результаты теста IGRA не меняются при иммунизации детей БЦЖ.

Ложноотрицательная реакция

Неадекватный ответ или отсутствие реакции на белок туберкулин при наличии инфекции Mycobacterium tuberculosis . Ложноотрицательные реакции можно увидеть в:

• Неадекватный Т-клеточный ответ или кожная анергия, вторичная по отношению к иммуносупрессии или естественному снижению
• Недавняя туберкулезная инфекция (менее 8 недель заражения)
• Эта кожная проба может не выявить старую туберкулезную инфекцию, т. Е. Многолетнюю.
• У детей младше шести месяцев
• Недавнее вирусное заболевание (например, ветряная оспа, корь и т. Д.)
• Недавняя вакцинация живым вирусом (например, корью, оспой и т. Д.) В течение 4-6 недель после теста
• Неправильное проведение теста
• Неверное прочтение теста

Двухэтапное тестирование и усиленная реакция

Способность некоторых людей реагировать на туберкулиновый антиген со временем ослабевает, что приводит к ложноотрицательной реакции.У людей с очень старой туберкулезной инфекцией (много лет) сенсибилизация к туберкулиновому пути будет слабой, и тест PPD может быть ложноотрицательным. Однако, если провести последующий тест, PPD туберкулина может стимулировать иммунную систему. У таких людей наблюдается усиленная реакция при последующем тестировании из-за «припоминания» иммунного ответа.

Это двухэтапное тестирование представляет собой проведение следующего второго теста после первоначального ложноотрицательного теста. Второй тест предпочтительно проводить через 1–5 недель после первого.[3]

Осложнения

Сообщалось о побочных эффектах, испытываемых некоторыми людьми, которые проходят этот тест, но частота четко не определена.

• Реакции гиперчувствительности тяжелой степени: анафилаксия, ангионевротический отек
• Местные побочные эффекты в месте инъекции: боль, дискомфорт, гематома, рубцы, зуд, некроз, изъязвление, образование пузырей, отек
• Одышка
• Лихорадка
• Предобморочное состояние и обморок

Безопасность пациентов и образование

• Людям, ранее имевшим тяжелую реакцию на кожную пробу с туберкулином PPD, не следует проходить повторное обследование.Тяжелые реакции включают некроз, образование пузырей, язвы или анафилактический шок.
• Вакцинация БЦЖ, беременность, ВИЧ-инфекция, введение в любом возрасте, включая младенцев / детей, повторный тест PPD, не является противопоказанием для кожного теста PPD.

Клиническая значимость

Преимущество теста PPD — быстрое выявление туберкулезной инфекции и, следовательно, быстрая диагностика туберкулеза. Хотя иногда инфекция может быть неактивной, обнаружение латентной формы ТБ позволяет начать лечение и снижает риск перехода в активную форму ТБ.Это очень простой и недорогой кожный тест (обычно не рекомендуется).

Каждому, у кого диагностирована латентная туберкулезная инфекция, следует поощрять лечение, чтобы снизить риск перехода в активную форму болезни. Вероятность завершения более коротких схем лечения выше, чем продолжительность режима лечения изониазидом от 6 до 9 месяцев. Кратковременные схемы включают схемы на 3 и 4 месяца:

• Еженедельно изониазид и рифапентин в течение 3 месяцев
• Рифампицин суточный в течение 4 месяцев

Обнаружение и лечение ЛТИ снижают бремя активного ТБ.